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생체에너지학

생화학의 하위 분야
(에너지대사에서 넘어옴)

생체에너지학(영어: bioenergetics)은 생체에서의 에너지 변환과 관련된 생화학 및 세포생물학의 한 분야이다.[1] 생물에너지학이라고도 한다. 생체에너지학은 살아 있는 생명체에서 에너지 변환에 관한 연구, 세포 호흡과 같은 수천 가지의 다른 세포 과정에 대한 연구, 아데노신 삼인산(ATP) 분자와 같은 형태의 에너지의 생산과 이용으로 이어지는 많은 다른 대사 및 효소적 과정에 대한 연구를 포함하는 생물학적 연구가 활발한 영역이다.[2][3] 즉, 생체에너지학의 목표는 살아 있는 생물이 생물학적 일을 수행하기 위해 에너지를 획득하고 변환하는 방법을 설명하는 것이다.[4] 따라서 대사 경로에 대한 연구는 생체에너지학에 필수적이다.

아데노신 삼인산(ATP)의 구조

개관

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생체에너지학은 생물에서 발견되는 분자의 화학 결합을 만들고 끊는 데 관여하는 에너지와 관련된 생화학의 하위 분야이다.[5] 생체에너지학은 또한 살아 있는 생물에서 에너지 관계와 에너지 변환에 대한 연구로 정의될 수 있다.[6] 다양한 대사 경로에서 에너지를 활용하는 능력은 모든 살아 있는 생물들의 특성이다. 에너지의 역할은 그러한 생물학적 과정의 기본이기 때문에 생장, 발생, 동화작용 및 이화작용은 생물 연구에서 중심적 과정의 일부이다.[7] 생명 활동은 에너지 변환에 의존한다. 살아 있는 생물은 살아 있는 세포와 외부 환경 간의 에너지 교환으로 인해 생존한다. 독립영양생물과 같은 일부 생물은 영양분을 섭취하고 분해할 필요 없이 광합성을 통해 햇빛으로부터 에너지를 얻을 수 있다.[8] 종속영양생물과 같은 다른 생물은 해당과정 및 시트르산 회로와 같은 대사 과정에서 영양소의 화학 결합을 분해하여 에너지를 얻을 수 있도록 음식물로부터 영양소를 섭취해야 한다. 중요하게도, 열역학 제1법칙의 직접적인 결과로 독립영양생물과 종속영양생물은 보편적인 대사 네트워크에 참여한다. 종속영양생물은 독립영양생물(예: 식물)을 먹음으로써 식물이 광합성으로 저장한 에너지를 이용한다.[9]

살아 있는 생물에서 화학 결합은 에너지 교환 및 변환의 일부로 끊어지고 만들어진다. 약한 결합이 끊어지고 더 강한 결합이 만들어질 때 에너지는 일(예: 기계적인 일) 또는 기타 과정(예: 화학 합성 및 생장에서의 동화 과정)에 사용될 수 있다. 더 강한 결합을 생성하면 사용 가능한 에너지를 방출할 수 있다.

아데노신 삼인산(ATP)은 생물에서 중요한 "에너지 화폐"이다. 대사 및 이화 과정의 목표는 사용 가능한 출발 물질(환경으로부터)로부터 ATP를 합성하고 생물학적 과정에서 ATP를 아데노신 이인산(ADP) 및 무기 인산염으로 분해하는 것이다.[4] 세포에서 ATP 대 ADP의 농도의 비율은 세포의 "에너지 충전"으로 알려져 있다. 세포는 이 에너지 충전을 사용하여 세포의 요구 사항에 대한 정보를 전달할 수 있다. 사용 가능한 ADP보다 ATP가 많으면 세포는 ATP를 사용하여 일을 수행할 수 있고, 사용 가능한 ATP보다 ADP가 많으면 세포는 산화적 인산화를 통해 ATP를 합성해야 한다.[5]

살아 있는 생물은 주로 산화적 인산화를 통해 ATP를 생성한다. ATP의 말단 인산 결합은 상대적으로 약한 결합으로 ATP가 ADP와 무기 인산으로 가수분해될 때 절단되어 에너지를 방출한다. 여기서 에너지의 방출을 초래하는 것은 열역학적으로 유리한 가수분해의 자유 에너지이다. 말단 인산기와 ATP 분자의 나머지 부분 사이의 인산 무수 결합 자체는 이 에너지를 포함하지 않는다.[10] 생물의 ATP 비축량은 세포에서 에너지를 저장하는 배터리로 사용된다.[11] 이러한 화학 결합 재배열로 인한 화학 에너지의 활용은 모든 생물체의 생물학적 과정을 강화시킨다.

살아 있는 생물은 유기물 및 무기물로부터 에너지를 얻는다. 즉, ATP는 다양한 생화학적 전구체로부터 합성될 수 있다. 예를 들어 무기영양생물은 아질산염과 같은 무기염류나 황, 아황산염, 황화 수소와 같은 황 형태를 산화시켜 ATP를 생성할 수 있다. 광합성에서 독립영양생물은 빛 에너지를 사용하여 ATP를 생산하는 반면, 종속영양생물은 주로 탄수화물, 지방, 단백질을 포함한 유기 화합물을 섭취해야 한다. 생물이 실제로 획득하는 에너지의 양은 소화, 대사 및 열발생에서의 에너지 손실 때문에 음식물이 연소될 때 방출되는 에너지 양보다 적다.[12]

생물이 섭취하는 물질은 일반적으로 산소와 결합하여 에너지를 방출하지만, 일부는 다양한 생물들에 의해 혐기적으로 산화될 수 있다. 이러한 물질의 활용은 영양소가 산소와 반응하기 때문에 느린 연소의 한 형태(물질은 생물이 실제로 불을 일으키지 않을만큼 충분히 천천히 산화됨)이다. 산화는 에너지를 방출하며, 이는 열로 전환되거나 생물이 생존에 필요한 화학 반응을 수행하기 위해 다른 화학 결합을 끊는 것과 같은 다른 목적을 위해 사용될 수 있다.

반응의 유형

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  • 에너지 방출반응은 에너지를 방출하는 자발적인 화학 반응이다.[4] 에너지방출반응은 열역학적으로 선호되며 음의 ΔG(깁스 자유 에너지) 값으로 표시된다. 반응 과정에서 에너지가 투입되어야 하며, 이 활성화 에너지는 반응물을 안정한 정상 상태에서 에너지적으로 매우 불안정한 전이 상태로, 에너지가 낮은 보다 안정적인 상태로 전환(반응 좌표 참조)시킨다. 반응물은 일반적으로 더 단순한 생성물로 분해되는 복잡한 분자이다. 전체 반응은 일반적으로 이화작용이다.[13] 반응물의 에너지가 생성물의 에너지보다 높기 때문에 에너지의 방출(깁스 자유 에너지라고 함)은 음(즉, −ΔG)이다.
  • 에너지 흡수반응은 에너지를 흡수하는 동화작용의 화학 반응이다.[3] 에너지흡수반응은 에너지방출반응의 반대 과정이다. 생성물이 제공하는 에너지보다 반응물의 결합을 끊는 데 더 많은 에너지를 필요로 하기 때문에 양의 ΔG 값(즉, 생성물은 반응물보다 결합이 더 약함)을 갖는다. 따라서 에너지흡수반응은 열역학적으로 선호되지 않는다. 그리고 에너지흡수반응은 일반적으로 동화작용이다.[14]

반응에서 얻거나 잃는 자유 에너지(ΔG)는 다음과 같이 계산할 수 있다.

ΔG = ΔH − TΔS

여기서 ∆G = 깁스 자유 에너지, ∆H = 엔탈피, T = 온도(켈빈 단위), ∆S = 엔트로피.[15]

주요 생체에너지학 관련 과정의 예

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  • 포도당신생합성은 해당과정의 반대 과정이다. 세포의 에너지 수준이 낮을 때(ADP의 농도가 ATP의 농도보다 높음) 세포는 단백질, 아미노산, 지방, 피루브산 등과 같은 탄소를 함유한 생체분자들로부터 포도당을 합성해야 한다.[17] 예를 들어, 단백질은 아미노산으로 분해될 수 있으며, 이러한 단순한 탄소 골격은 포도당을 합성하는 데 사용된다.
  • 케토시스는 세포에서 케톤체가 에너지로 사용(포도당을 사용하는 대신에)되는 대사 과정이다. 포도당 수치가 낮을 때(예: 기아 상태) 세포는 보통 에너지원으로 케톤체를 사용한다.[20]

공동수송

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1960년 8월에 로버트 K. 크레인은 장내 포도당 흡수 메커니즘으로서 Na+-포도당 공동수송의 발견을 처음으로 발표했다.[23] 크레인의 공동수송의 발견은 생물학에서 짝지어진 흐름에 대한 최초의 제안이었으며, 20세기의 탄수화물 흡수에 관한 가장 중요한 사건이었다.[24][25]

화학삼투설

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생체에너지학의 주요 성과 중 하나는 미토콘드리아와 같은 세포소기관에서 ATP의 생성에 수용액의 양성자가 어떻게 기능하는 지에 대한 피터 D. 미첼의 화학삼투설이다.[26] 이러한 공로로 미첼은 1978년에 노벨 화학상을 수상했다. 해당과정에서와 같이 기질수준 인산화에 의한 ATP의 생성 과정이 먼저 이해되었지만, 효소의 활성을 ATP 생성과 직접적으로 연결하는 기질수준 인산화는 대부분의 산소 호흡을 하는 세포에서 ATP를 다량으로 생성하는 주된 과정은 아니다. 화학삼투적 인산화는 대부분의 세포에서 주요 에너지 생성 과정이며 미토콘드리아 외에도 엽록체 및 여러 단세포 생물에서 사용된다.

에너지 균형

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에너지 항상성은 생명 시스템에서 음식물의 섭취를 통해 얻은 에너지와 에너지 소비의 차이인 에너지 균형에 대한 항상성의 조절 과정이다.[27][28]

같이 보기

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각주

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  1. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 24.
  2. ↑ Green, D. E.; Zande, H. D. (1981). “Universal energy principle of biological systems and the unity of bioenergetics”. 《Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America》 78 (9): 5344–5347. Bibcode:1981PNAS...78.5344G. doi:10.1073/pnas.78.9.5344. PMC 348741. PMID 6946475. 
  3. ↑ 가 나 Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 27.
  4. ↑ 가 나 다 Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 24.
  5. ↑ 가 나 Ferrick D.A., Neilson A., Beeson C (2008). Advances in measuring cellular bioenergetics using extracellular flux. Drug Discovery Today, 13 5 & 6: 268- 274. Accessed 9 April 2017.
  6. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 506.
  7. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 28.
  8. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 22.
  9. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pgs. 22, 506.
  10. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 522- 523.
  11. ↑ Hardie, D.G., Ross, F.A., Hawley, S.A (2012). AMPK: a nutrient and energy sensor that maintains energy homeostasis. Nature, 13 251- 262. Accessed 9 April 2017.
  12. ↑ FAO, Calculation of the Energy Content of Foods—Energy Conversion Factors
  13. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 502.
  14. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg. 503.
  15. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., p. 23.
  16. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 544.
  17. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 568.
  18. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 633.
  19. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 640.
  20. ↑ Owen, O.E. (2005) Ketone Bodies as a Fuel for the Brain during Starvation. The International Union of Biochemistry and Molecular Biology. 33:4, 246- 251.
  21. ↑ 가 나 Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 731.
  22. ↑ Nelson, David L., Cox, Michael M. Lehninger: Principles of Biochemistry. New York: W.H. Freeman and Company, 2013. Sixth ed., pg 734.
  23. ↑ Robert K. Crane, D. Miller and I. Bihler. "The restrictions on possible mechanisms of intestinal transport of sugars". In: Membrane Transport and Metabolism. Proceedings of a Symposium held in Prague, August 22–27, 1960. Edited by A. Kleinzeller and A. Kotyk. Czech Academy of Sciences, Prague, 1961, pp. 439-449.
  24. ↑ Wright, Ernest M.; Turk, Eric (2004). “The sodium glucose cotransport family SLC5”. 《Pflügers Arch》 447 (5): 510–8. doi:10.1007/s00424-003-1063-6. PMID 12748858. Robert K. Crane in 1961 was the first to formulate the cotransport concept to explain active transport [7]. Specifically, he proposed that the accumulation of glucose in the intestinal epithelium across the brush border membrane was coupled to downhill Na+
     transport cross the brush border. This hypothesis was rapidly tested, refined and extended [to] encompass the active transport of a diverse range of molecules and ions into virtually every cell type.     
  25. ↑ Boyd, C A R (2008). “Facts, fantasies and fun in epithelial physiology”. 《Experimental Physiology》 93 (3): 303–14. doi:10.1113/expphysiol.2007.037523. PMID 18192340. 2012년 12월 10일에 원본 문서에서 보존된 문서. the insight from this time that remains in all current text books is the notion of Robert K. Crane published originally as an appendix to a symposium paper published in 1960 (Robert K. Crane et al. 1960). The key point here was 'flux coupling', the cotransport of sodium and glucose in the apical membrane of the small intestinal epithelial cell. Half a century later this idea has turned into one of the most studied of all transporter proteins (SGLT1), the sodium–glucose cotransporter. 
  26. ↑ Peter Mitchell (1961). “Coupling of phosphorylation to electron and hydrogen transfer by a chemi-osmotic type of mechanism”. 《Nature》 191 (4784): 144–8. Bibcode:1961Natur.191..144M. doi:10.1038/191144a0. PMID 13771349. 
  27. ↑ Malenka RC, Nestler EJ, Hyman SE (2009). Sydor A, Brown RY, 편집. 《Molecular Neuropharmacology: A Foundation for Clinical Neuroscience》 2판. New York: McGraw-Hill Medical. 179, 262–263쪽. ISBN 9780071481274. Orexin neurons are regulated by peripheral mediators that carry information about energy balance, including glucose, leptin, and ghrelin. ... Accordingly, orexin plays a role in the regulation of energy homeostasis, reward, and perhaps more generally in emotion. ... The regulation of energy balance involves the exquisite coordination of food intake and energy expenditure. Experiments in the 1940s and 1950s showed that lesions of the lateral hypothalamus (LH) reduced food intake; hence, the normal role of this brain area is to stimulate feeding and decrease energy utilization. In contrast, lesions of the medial hypothalamus, especially the ventromedial nucleus (VMH) but also the PVN and dorsomedial hypothalamic nucleus (DMH), increased food intake; hence, the normal role of these regions is to suppress feeding and increase energy utilization. Yet discovery of the complex networks of neuropeptides and other neurotransmitters acting within the hypothalamus and other brain regions to regulate food intake and energy expenditure began in earnest in 1994 with the cloning of the leptin (ob, for obesity) gene. Indeed, there is now explosive interest in basic feeding mechanisms given the epidemic proportions of obesity in our society, and the increased toll of the eating disorders, anorexia nervosa and bulimia. Unfortunately, despite dramatic advances in the basic neurobiology of feeding, our understanding of the etiology of these conditions and our ability to intervene clinically remain limited. 
  28. ↑ Morton GJ, Meek TH, Schwartz MW (2014). “Neurobiology of food intake in health and disease”. 《Nat. Rev. Neurosci.》 15 (6): 367–378. doi:10.1038/nrn3745. PMC 4076116. PMID 24840801. However, in normal individuals, body weight and body fat content are typically quite stable over time2,3 owing to a biological process termed ‘energy homeostasis’ that matches energy intake to expenditure over long periods of time. The energy homeostasis system comprises neurons in the mediobasal hypothalamus and other brain areas4 that are a part of a neurocircuit that regulates food intake in response to input from humoral signals that circulate at concentrations proportionate to body fat content4-6. ... An emerging concept in the neurobiology of food intake is that neurocircuits exist that are normally inhibited, but when activated in response to emergent or stressful stimuli they can override the homeostatic control of energy balance. Understanding how these circuits interact with the energy homeostasis system is fundamental to understanding the control of food intake and may bear on the pathogenesis of disorders at both ends of the body weight spectrum. 

더 읽을거리

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